uzspbgmuУчёные записки Первого Санкт-Петербургского государственного медицинского университета имени академика И. П. ПавловаThe Scientific Notes of the Pavlov University1607-41812541-8807Academician I.P. Pavlov First St. Petersburg State Medical University10.24884/1607-4181-2023-30-1-27-36uzspbgmu-985Research ArticleОРИГИНАЛЬНЫЕ РАБОТЫORIGINAL PAPERSВозможности клеточной терапии в торакальной хирургииPossibilities of cell therapy in thoracic surgeryhttps://orcid.org/0000-0003-4572-4750ПоляковИ. С.PolyakovI. S.

Поляков Игорь Станиславович, кандидат медицинских наук, 1-й зам. главного врача, зав. отделением онкологии 

г. Краснодар

Polyakov Igor S., Cand. of Sci. (Med.), The First Deputy Chief Physician, Head of the Oncology Department,

Krasnodar

https://orcid.org/0000-0003-0572-1395ПорхановВ. А.PorhanovV. A.

Порханов Владимир Алексеевич, доктор медицинских наук, профессор, академик РАН, главный врач 

г. Краснодар

Porhanov Vladimir A., Dr. of Sci. (Med.), Professor, Academician of the Russian Academy of Sciences, Chief Physician 

Krasnodar

https://orcid.org/0000-0002-3290-1183КоваленкоА. Л.KovalenkoA. L.

Коваленко Алексей Львович, зав. отделением торакальной хирургии № 1 

г. Краснодар

Kovalenko Aleksey L., Head of the Thoracic Department 

Krasnodar

https://orcid.org/0000-0002-9766-1811ГилевичИ. В.GilevichI. V.

Гилевич Ирина Валериевна, кандидат медицинских наук, зав. лабораторией разработки и изучения новых технологий лечения заболеваний 

350086, г. Краснодар, ул.1 Мая, д. 167.

Gilevich Irina V., Cand. of Sci. (Med.), Head of the Laboratory for Development and Study of New Treatment Technologies 

Krasnodar

giliv@list.ruhttps://orcid.org/0000-0002-7866-2288ПонкинаО. Н.PonkinaO. N.

Понкина Ольга Николаевна, кандидат медицинских наук, зав. патологоанатомическим отделением 

г. Краснодар

Ponkina Olga N., Cand. of Sci. (Med.), Head of the Pathoanatomical Department 

Krasnodar

https://orcid.org/0009-0005-2235-3688ЗимаВ. С.ZimaV. S.

Зима Виктор Сергеевич, врач-анестезиолог 

г. Краснодар

Zima Viktor S., Anesthesiologist 

Krasnodar

https://orcid.org/0000-0003-3606-1668Карал-оглыД. Д.Karal-oglyD. D.

Карал-оглы Джина Джинаровна, кандидат биологических наук, заместитель директора по науке, заведующая лабораторией доклинических и клинических исследований лекарственных средств и медицинских изделий 

г. Сочи

Karal-ogly Djina D., Cand. of Sci. (Biol.), Deputy Director for Science, Head of the Laboratory for Preclinical and Clinical Studies of Medicines and Medical Devices 

Sochi

https://orcid.org/0000-0001-6080-8042ОрловС. В.OrlovS. V.

Орлов Сергей Владимирович, доктор медицинских наук, директор 

г. Сочи

Orlov Sergey V., Dr. of Sci. (Med.), Director 

Sochi

https://orcid.org/0000-0001-7322-0459СотниченкоА. С.SotnichenkoA. S.

Сотниченко Александр Сергеевич, кандидат медицинских наук, доцент кафедры патологической анатомии 

г. Краснодар

Sotnichenko Alexander S., Cand. of Sci. (Med.), Associate Professor of the Department of Pathological Anatomy 

Krasnodar

https://orcid.org/0000-0002-3276-9733ЗавгородняяА. Г.ZavgorodnyayaA. G.

Завгородняя Анна Германовна, аспирант кафедры фундаментальной и клинической биохимии 

г. Краснодар

Zavgorodnyaya Anna G., Postgraduate Student of the Department of Fundamental and Clinical Biochemistry 

Krasnodar

Государственное бюджетное учреждение здравоохранения «Научно-исследовательский институт – Краевая клиническая больница № 1 им. профессора С. В. Очаповского» Министерства здравоохранения Краснодарского края; Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Кубанский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской ФедерацииРоссияScientific Research Institute – Regional Clinical Hospital №1 named after Professor S. V. Ochapovsky; Kuban State Medical UniversityRussian FederationГосударственное бюджетное учреждение здравоохранения «Научно-исследовательский институт – Краевая клиническая больница № 1 им. профессора С. В. Очаповского» Министерства здравоохранения Краснодарского краяРоссияScientific Research Institute – Regional Clinical Hospital №1 named after Professor S. V. OchapovskyRussian FederationФедеральное государственное бюджетное научное учреждение «Научно-исследовательский институт медицинской приматологии»РоссияResearch Institute of Medical PrimatologyRussian FederationФедеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Кубанский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской ФедерацииРоссияKuban State Medical UniversityRussian Federation2023010820233012736Copyright © Поляков И.С., Порханов В.А., Коваленко А.Л., Гилевич И.В., Понкина О.Н., Зима В.С., Карал-оглы Д.Д., Орлов С.В., Сотниченко А.С., Завгородняя А.Г., 20232023Поляков И.С., Порханов В.А., Коваленко А.Л., Гилевич И.В., Понкина О.Н., Зима В.С., Карал-оглы Д.Д., Орлов С.В., Сотниченко А.С., Завгородняя А.Г.Polyakov I.S., Porhanov V.A., Kovalenko A.L., Gilevich I.V., Ponkina O.N., Zima V.S., Karal-ogly D.D., Orlov S.V., Sotnichenko A.S., Zavgorodnyaya A.G.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://www.sci-notes.ru/jour/article/view/985

Введение. Бронхиальные свищи чаще всего возникают после оперативного вмешательства на легких и являются крайне тяжелым осложнением с высокой смертностью. Способы лечения бронхиальных свищей, несмотря на их разнообразие, не всегда являются эффективными. В работе представлен способ профилактики развития бронхиальных свищей, основанный на клеточной терапии. Цель – оценить влияние клеточной терапии на регенерацию поврежденной ткани бронха в эксперименте на нечеловекообразных приматах. Методы и материалы. Исследование было выполнено на 6 особях нечеловекообразных приматов. Лабораторные животные были разделены на 2 группы: опытная и контрольная. Каждому примату была выполнена левая пневмонэктомия с формированием культи главного бронха. В опытной группе в зону культи был введен регенеративный продукт, в контрольной группе – 0,9 % раствор NaCl. Регенеративный продукт состоял из аутологичной плазмы, обогащенной тромбоцитами, активированной температурным лизисом, и культуры ксеногенных фибробластов. Период наблюдения за приматами составил 7, 14 и 21 суток, в течение которого забирали периферическую кровь для изучения динамики биологически активных веществ. По окончании периода наблюдения было проведено гистологическое исследование аутопсийного материала. Результаты. В первые сутки в обеих группах наблюдалась типичная воспалительная реакция, связанная с интраоперационным повреждением тканей, но в дальнейшем морфологические изменения в обеих группах были различными. В опытной группе воспалительные явления были слабо выражены, восстановление непрерывности слизистой оболочки и формирование рубцовой ткани начинало происходить раньше, чем в группе контроля. Анализ динамики плазменных медиаторов в послеоперационном периоде выявил более раннее доминирование репаративных процессов в опытной группе. Заключение. Результаты исследования показали, что клеточная терапия способствует ускорению процессов регенерации тканей, тем самым предотвращая несостоятельность шва культи бронха.

Introduction. Bronchial fistula often occurs after lung surgery. This is an extremely severe complication with high mortality. Despite the variety methods for the treatment of bronchial fistula, the results are not always effective. In our paper, we presented a method of preventing the development of bronchial fistula based on the cell therapy. The objective of the study was to evaluate the effects of the cell therapy on the regeneration of damaged bronchial tissue in an experiment on non-human primates. Methods and materials. The study was performed on 6 non-human primates. Laboratory animals were divided into 2 groups: experimental and control. The left pneumonectomy with the formation of a stump of the main bronchus was done in each primate. In the experimental group, a regenerative product was introduced into the stump; in the control group, 0.9 % NaCl solution was used. The regenerative product consisted of autologous platelet-rich plasma activated by thermal lysis and the suspension of the xenogeneic fibroblast’s culture. The primates were observed for 7, 14 and 21 days, the peripheral blood was taken to study the dynamics of biologically active substances. A histological examination of the autopsy material was performed at the end of the follow-up time. Results. On the early postoperative period, a typical inflammatory reaction was observed and resulted by the intraoperative tissue damage. Then the morphological changes were different in both group. The inflammatory were mild, the restoration of the natural function of the mucous membrane and the formation of scar tissue were earlier in the experimental group than in the control group. An analysis of the dynamics of plasma mediators in the postoperative period revealed an earlier dominance of regenerative processes in the experimental group. Conclusion. The results of the study showed that the cell therapy stimulates the tissue regeneration, thereby preventing the failure of the bronchial stump suture.

нечеловекообразные приматыбронхиальные свищиклеточная терапияфибробластыплазмаобогащенная тромбоцитамиnon-human primatesbronchial fistulacell therapyfibroblastsplatelet rich plasmaReferencesGuo S., Bai Y., Li Y., Chen T. A large central bronchopleural fistula closed by bronchoscopic administration of recombinant bovine basic fibroblast growth factor: a case report // Respiration. – 2021. – Vol. 100, № 10. – P. 1000–1004. Doi: 10.1159/000514717.Guo S., Bai Y., Li Y., Chen T. A large central bronchopleural fistula closed by bronchoscopic administration of recombinant bovine basic fibroblast growth factor: a case report // Respiration. 2021;100(10):1000–1004. Doi: 10.1159/000514717Порханов В. А., Поляков И. С., Кононенко В. Б. и др. Трансстернальная окклюзия свища главного бронха после пневмонэктомии // Хирургия. Журнал им. Н. И. Пирогова. – 2020. – Т. 10. – С. 11–22. Doi: 10.17116/hirurgia202010111.Porkhanov V.A., Polyakov I. S., Kononenko V. B. et al. Transsternal occlusion of main bronchi fistulae after pneumonectomy // PirogovRussian Journal of Surgery. 2020;(10):11–22. Doi: 10.17116/hirurgia202010111.Aho J. M., Dietz A. B., Radel D. J. et al. Closure of a recurrent bronchopleural fistula using a matrix seeded with patient-derived mesenchymal stem cells // Stem Cells Transl Med. – 2016. – Vol. 5, № 10. – P. 1375–1379. Doi: 10.5966/sctm.2016-0078.Aho J. M., Dietz A. B., Radel D. J. et al. Closure of a recurrent bronchopleural fistula using a matrix seeded with patient-derived mesenchymal stem cells // Stem Cells Transl Med. 2016;5(10):1375–1379. Doi: 10.5966/sctm.2016-0078.Li S., Fan J., Liu J., Zhou J., Ren Y., Shen C., Che G. Neoadjuvant therapy and risk of bronchopleural fistula after lung cancersurgery: a systematic meta-analysis of 14 912 patients//Jpn J Clin Oncol. – 2016. – Vol. 46, № 6. – P. 534–46. Doi: 10.1093/jjco/hyw037.Li S., Fan J., Liu J., Zhou J., Ren Y., Shen C., Che G. Neoadjuvant therapy and risk of bronchopleural fistula after lung cancer surgery: a systematic meta-analysis of 14 912 patients // Jpn J Clin Oncol. 2016;46(6):534–46. Doi: 10.1093/jjco/hyw037.Petrella F., Toffalorio F., Brizzola S. et al. Stem cell transplantation effectively occludes bronchopleural fistula in an animal model // Ann Thorac Surg. – 2014. – Vol. 97, № 2. – P. 480–3. Doi: 10.1016/j.athoracsur.2013.10.032.Petrella F., Toffalorio F., Brizzola S. et al. Stem cell transplantation effectively occludes bronchopleural fistula in an animal model //Ann Thorac Surg. 2014;97(2):480–3. Doi: 10.1016/j.athoracsur.2013.10.032.Skrzypczak P., Roszak M., Kasprzyk M. et al. The technique of stump closure has no impact on post-pneumonectomy bronchopleural fistula in the non-small cell lung cancer – a cross-sectional study // J Thorac Dis. – 2022. – Vol. 14, № 9. – P. 3343–3351. Doi: 10.21037/jtd-22-240.Skrzypczak P., Roszak M., Kasprzyk M. et al. The technique of stump closure has no impact on post-pneumonectomy bronchopleural fistula in the non-small cell lung cancer – a cross-sectionalstudy //J Thorac Dis. 2022;14(9):3343–3351. Doi: 10.21037/jtd-22-240.Uchibori A., Okada S., Takeda-Miyata N. et al. Omental flap for bronchopleural fistula after pneumonectomy and aorta replacement // Ann Thorac Surg. – 2020. – Vol. 109, № 5. – P. e349–e351. Doi: 10.1016/j.athoracsur.2019.08.079.UchiboriA., Okada S.,Takeda-Miyata N. et al. Omental flap for bronchopleural fistula after pneumonectomy and aorta replacement // Ann Thorac Surg. 2020;109(5):e349–e351. Doi: 10.1016/j.athoracsur.2019.08.079.Saadi A., Perentes J. Y., Gonzalez M. et al. Vacuum-assisted closure device: a useful tool in themanagement ofsevere intrathoracic infections//Ann Thorac Surg. – 2011. – Vol. 91, № 5. – P. 1582–9. Doi: 10.1016/j.athoracsur.2011.01.018.Saadi A., Perentes J. Y., Gonzalez M. et al. Vacuum-assisted closure device: a useful tool in the management of severe intrathoracic infections // Ann Thorac Surg. 2011;91(5):1582–9. Doi: 10.1016/j.athoracsur.2011.01.018.Passera E., Guanella G., Meroni A. et al. Amplatzer device and vacuum-assisted closure therapy to treat a thoracic empyema with bronchopleural fistula // Ann Thorac Surg. – 2011. – Vol. 92, № 2. – P. e23–5. Doi: 10.1016/j.athoracsur.2011.03.047.Passera E., Guanella G., Meroni A. et al. Amplatzer device and vacuum-assisted closure therapy to treat a thoracic empyema with bronchopleural fistula // Ann Thorac Surg. 2011;92(2):e23–5. Doi: 10.1016/j.athoracsur.2011.03.047.Iwasaki M., Shimomura M., Ii T. Negative-pressure wound therapy in combination with bronchial occlusion to treat bronchopleural fistula: a case report // Surg Case Rep. – 2021. – Vol. 7, № 1. – P. 61. Doi: 10.1186/s40792-021-01144-4.Iwasaki M., Shimomura M., Ii T. Negative-pressure wound therapy in combination with bronchial occlusion to treat bronchopleural fistula: a case report // Surg Case Rep. 20212;7(1):61. Doi: 10.1186/s40792-021-01144-4.Mazzella A., Pardolesi A., Maisonneuve P. et al. Bronchopleural fistula after pneumonectomy: risk factors and management, focusing on open-window thoracostomy // Semin Thorac Cardiovasc Surg. – 2018. – Vol. 30, № 1. – P. 104–113. Doi: 10.1053/j.semtcvs.2017.10.003.Mazzella A., Pardolesi A., Maisonneuve P. et al. Bronchopleural fistula after pneumonectomy: risk factors and management, focusing on open-window thoracostomy // Semin Thorac Cardiovasc Surg. 2018;30(1):104–113. Doi: 10.1053/j.semtcvs.2017.10.003.Trivisonno A., Nachira D., Boškoski I. et al. Regenerative medicine approachesfor the management of respiratory tract fistulas // Stem Cell Res Ther. – 2020. – Vol. 11, № 1. – P. 451. Doi: 10.1186/s13287-020-01968-1.TrivisonnoA., Nachira D., Boškoski I. et al. Regenerative medicine approachesfor the management of respiratory tract fistulas // Stem Cell Res Ther. 2020;11(1):451. Doi: 10.1186/s13287-020-01968-1.Xue X., Yan Y., Ma Y. et al. Stem-cell therapy for esophageal anastomotic leakage by autografting stromal cells in fibrin scaffold // Stem Cells Transl Med. – 2019. – Vol. 8, № 6. – P. 548–556. Doi: 10.1002/sctm.18-0137.Xue X., Yan Y., Ma Y. et al. Stem-cell therapy for esophageal anastomotic leakage by autografting stromal cells in fibrin scaffold // Stem Cells Transl Med. 2019;8(6):548–556. Doi: 10.1002/sctm.18-0137.Sersar S. I., Maghrabi L. A. Respiratory-digestive tract fistula: two-center retrospective observational study // Asian Cardiovasc ThoracAnn. – 2018. – Vol. 26, № 3. – P. 218–223. Doi: 10.1177/0218492318755013.Sersar S. I., Maghrabi L. A. Respiratory-digestive tract fistula: two-center retrospective observational study // Asian Cardiovasc Thorac Ann. 2018;26(3):218–223. Doi: 10.1177/0218492318755013.Choi S., Jeon B. G., Chae G., Lee S. J. The clinical efficacy of stem cell therapy for complex perianal fistulas: a meta-analysis // Tech Coloproctol. – 2019. – Vol. 23, № 5. – P. 411–427. Doi: 10.1007/s10151-019-01994-z.Choi S., Jeon B. G., Chae G., Lee S. J. The clinical efficacy of stem cell therapy for complex perianal fistulas: a meta-analysis// Tech Coloproctol. 2019;23(5):411–427. Doi: 10.1007/s10151-019-01994-z.Castro-Poceiro J., Fernández-Clotet A., Panés J. Mesenchymalstromal cellsin the treatment of perianal fistulasin Crohn’s disease // Immunotherapy. – 2018. – Vol. 10, № 14. – P. 1203–1217. Doi: 10.2217/imt-2018-0099.Castro-Poceiro J., Fernández-ClotetA., PanésJ. Mesenchymalstromal cellsin the treatment of perianal fistulasin Crohn’s disease // Immunotherapy. 2018;10(14):1203–1217. Doi: 10.2217/imt-2018-0099.Panés J., García-Olmo D., Van Assche G. et al. ADMIRE CD study group collaborators. Long-term efficacy and safety of stem cell therapy , № Cx601. – P. for complex perianal fistulas in patients with Crohn’s disease // Gastroenterology. – 2018. – Vol. 154, № 5. – P. 1334–1342.e4. Doi: 10.1053/j.gastro.2017.12.020.Panés J., García-Olmo D., Van Assche G. et al. ADMIRE CD study group collaborators. Long-term efficacy and safety of stem cell therapy (Cx601) for complex perianal fistulas in patients with Crohn’s disease // Gastroenterology. 2018;154(5):1334–1342.e4. Doi: 10.1053/j.gastro.2017.12.020.Zeng Y., Gao H. Z., Zhang X. B., Lin H. H. Closure of bronchopleural fistula with mesenchymal stem cells: case report and brief literature review // Respiration. – 2019. – Vol. 97, № 3. – P. 273–276. Doi: 10.1159/000493757.Zeng Y., Gao H. Z., Zhang X. B., Lin H. H. Closure of bronchopleural fistula with mesenchymal stem cells: case report and brief literature review // Respiration. 2019; 97(3):273–276. Doi: 10.1159/000493757.Díaz-Agero Álvarez P. J., Bellido-Reyes Y. A., Sánchez-Girón J. G. et al. Novel bronchoscopic treatment for bronchopleural fistula using adipose-derived stromal cells // Cytotherapy. – 2016. – Vol. 18, № 1. – P. 36–40. Doi: 10.1016/j.jcyt.2015.10.003.Díaz-Agero Álvarez P. J., Bellido-Reyes Y. A., Sánchez-Girón J. G. et al. Novel bronchoscopic treatment for bronchopleural fistula using adipose-derived stromal cells // Cytotherapy. 2016;18(1):36–40. Doi: 10.1016/j.jcyt.2015.10.003.Wu M., Lin H., Shi L. et al. Bronchoscopic treatment of tracheobronchial fistula with autologous platelet-rich plasma // Ann Thorac Surg. – 2021. – Vol. 111, № 2. – P. e129–e131. Doi: 10.1016/j.athoracsur.2020.05.047.Wu M., Lin H., Shi L. et al. Bronchoscopic treatment of tracheobronchial fistula with autologous platelet-rich plasma // Ann Thorac Surg. 2021;111(2):e129–e131. Doi: 10.1016/j.athoracsur.2020.05.047.Okuda M., Yokomise H., Tarumi S., Huang C. L. Non-surgical closure of post-pneumonectomy empyema with bronchopleural fistula after open window thoracotomy using basic fibroblast growth factor // Interact Cardiovasc Thorac Surg. – 2009. – Vol. 9, № 5. – P. 916–8. Doi: 10.1510/icvts.2009.212308.Okuda M., Yokomise H., Tarumi S., Huang C. L. Non-surgical closure of post-pneumonectomy empyema with bronchopleural fistula after open window thoracotomy using basic fibroblast growth factor // Interact Cardiovasc Thorac Surg. 2009;9(5):916–8. Doi: 10.1510/icvts.2009.212308.Kondo N., Hashimoto M., Takuwa T. et al. Treatment of bronchial fistula after extraplural pneumonectomy using flexible bronchoscopy with the administration of OK432, fibroblast growth factor basic and fibrin glue sealant // Gen Thorac Cardiovasc Surg. – 2020. – Vol. 68, № 12. – P. 1562–1564. Doi: 10.1007/s11748-020-01349-8.Kondo N., Hashimoto M., Takuwa T. et al. Treatment of bronchial fistula after extraplural pneumonectomy using flexible bronchoscopy with the administration of OK432, fibroblast growth factor basic and fibrin glue sealant // GenThorac Cardiovasc Surg. 2020;68(12):1562–1564. Doi: 10.1007/s11748-020-01349-8.Siddique A., Sabbah B. N., Arabi T. et al. Treatment of bronchial anastomoticfistula using autologous platelet-rich plasma post lung transplantation // J Cardiothorac Surg. – 2022. – Vol. 17, № 1. – P. 204. Doi: 10.1186/s13019-022-01965-w.Siddique A., Sabbah B. N., Arabi T. et al. Treatment of bronchial anastomotic fistula using autologous platelet-rich plasma post lung transplantation // J Cardiothorac Surg. 2022;17(1):204. Doi: 10.1186/s13019-022-01965-w.Агрба В. З., Лапин Б. А., Порханов В. А. и др. Культура мезенхимальных стволовых клеток лабораторных приматов и перспективы их использования в экспериментальной медицине // Стволовые клетки и регенеративная медицина: Сборник статей / под ред. В. А. Ткачука – М.: МАКС Пресс, 2012. – С. 23–30.Agrba V. Z., Lapin B. A., Porhanov V. A. et al. Mesenchymal stem cell culture of laboratory primates and the prospects for their use in experimental medicine // Stem cells and regenerative medicine: Collection of articles / eds by V. A. Tkachuk. Moscow, MAKS Press, 2012:23–30. (In Russ.).Seguin A., Baccari S., Holder-Espinasse M. et al. Tracheal regeneration: evidence of bone marrow mesenchymal stem cell involvement // J Thorac Cardiovasc Surg. – 2013. – Vol. 145, № 5. – P. 1297–1304.e2. Doi: 10.1016/j.jtcvs.2012.09.079.Seguin A., Baccari S., Holder-Espinasse M. et al. Tracheal regeneration: evidence of bone marrow mesenchymal stem cell involvement // J Thorac Cardiovasc Surg. 2013;145(5):1297–1304.e2. Doi: 10.1016/j.jtcvs.2012.09.079.Moriyama M., Matsumoto K., Taniguchi D. et al. Successful use of bio plugs for delayed bronchial closure after pneumonectomy in experimental settings // Interact Cardiovasc Thorac Surg. – 2022. – Vol. 34, № 4. – P. 660–667. Doi: 10.1093/icvts/ivab306.Moriyama M., Matsumoto K., Taniguchi D. et al. Successful use of bio plugs for delayed bronchial closure after pneumonectomy in experimental settings // Interact Cardiovasc Thorac Surg. 2022;34(4):660–667. Doi: 10.1093/icvts/ivab306.Petrella F., Spaggiari L. Stem Cells Application in Thoracic Surgery: Current Perspective and Future Directions //Adv Exp Med Biol. – 2018. – Vol. 1089. – P. 143–147. Doi: 10.1007/5584_2018_180.Petrella F., Spaggiari L. Stem CellsApplication inThoracic Surgery: Current Perspective and Future Directions // Adv Exp Med Biol. 2018;1089:143–147. Doi: 10.1007/5584_2018_180.Brown C., McKee C., Bakshi S. et al. Mesenchymal stem cells: cell therapy and regeneration potential // J Tissue Eng Regen Med. – 2019. – Vol. 13, № 9. – P. 1738–1755. Doi: 10.1002/term.2914.Brown C., McKee C., Bakshi S. et al. Mesenchymal stem cells: cell therapy and regeneration potential // J Tissue Eng Regen Med. 2019;13(9):1738–1755. Doi: 10.1002/term.2914.Fan X. L., Zhang Y., Li X., Fu Q. L. Mechanisms underlying the protective effects of mesenchymal stem cellbased therapy // Cell Mol Life Sci. – 2020. – Vol. 77, № 14. – P. 2771–2794. Doi: 10.1007/s00018-020-03454-6.Fan X. L., Zhang Y., Li X., Fu Q. L. Mechanisms underlying the protective effects of mesenchymal stem cellbased therapy // Cell Mol Life Sci. 2020;77(14):2771–2794. Doi: 10.1007/s00018-020-03454-6.Егоров В. И., Ионов П. М., Юркевич Ю. В. и др. Первый опыт применения клеточных технологий в торакальной хирургии // Вестник Северо-Западного государственного медицинского университета им. И. И. Мечникова. – 2015. – Т. 7, № 2. – С. 7–13.Egorov V. I., Ionov P. M., Jurkiewicz Y. V. et al. First experience of cell technologies in thoracic surgery // Herald of the Northwestern State Medical University named after I. I. Mechnikov. 2015;7(2):7–13. (In Russ.).Everts P., Onishi K., Jayaram P., Lana J. F., Mautner K. Platelet-rich plasma: new performance understandings and therapeutic considerations in 2020 // Int J Mol Sci. – 2020. – Vol. 21, № 20. – P. 7794. Doi: 10.3390/ijms21207794.Everts P., Onishi K., Jayaram P., Lana J. F., Mautner K. Platelet-rich plasma: new performance understandings and therapeutic considerations in 2020 // Int J Mol Sci. 2020; 21(20):7794. Doi: 10.3390/ijms21207794.Motz K. M., Yin L. X., Samad I. et al. Quantification of inflammatory markersin laryngotrachealstenosis// Otolaryngol Head Neck Surg. – 2017. – Vol. 157, № 3. – P. 466–472. Doi: 10.1177/0194599817706930.Motz K. M., Yin L. X., Samad I. et al. Quantification of inflammatory markers in laryngotracheal stenosis // Otolaryngol Head Neck Surg. 2017;157(3):466–472. Doi: 10.1177/0194599817706930.Short W. D., Steen E., Kaul A. et al. IL-10 promotes endothelial progenitor cell infiltration and wound healing via STAT3 // FASEB J. – 2022. – Vol. 36, № 7. – P. e22298. Doi: 10.1096/fj.201901024RR.Short W. D., Steen E., Kaul A. et al. IL-10 promotes endothelial progenitor cell infiltration and wound healing via STAT3 // FASEB J. 2022;36(7):e22298. Doi: 10.1096/fj.201901024RR.Kuhn K. A., Manieri N. A., Liu T. C., Stappenbeck T. S. IL-6 stimulatesintestinal epithelial proliferation and repair after injury // PLoS One. – 2014. – Vol. 9, № 12. – P. e114195. Doi: 10.1371/journal.pone.0114195.Kuhn K.A., Manieri N.A., LiuT.C., Stappenbeck T. S. IL-6 stimulates intestinal epithelial proliferation and repair after injury // PLoS One. 2014;9(12):e114195. Doi: 10.1371/journal.pone.0114195.Rodrigues M., Kosaric N., Bonham C. A., Gurtner G. C. Wound Healing: A Cellular Perspective // Physiol Rev. – 2019. – Vol. 99, № 1. – P. 665–706. Doi: 10.1152/physrev.00067.2017.Rodrigues M., Kosaric N., Bonham C. A., Gurtner G. C. Wound Healing: A Cellular Perspective // Physiol Rev. 2019;99(1):665–706. Doi: 10.1152/physrev.00067.2017.Chuliá-Peris L., Carreres-Rey C., Gabasa M. et al. Matrix metalloproteinases and their inhibitors in pulmonary fibrosis: EMMPRIN/CD147 comes into play // Int J Mol Sci. – 2022. – Vol. 23, № 13. – P. 6894. Doi: 10.3390/ijms23136894.Chuliá-Peris L., Carreres-Rey C., Gabasa M. et al. Matrix metalloproteinases and their inhibitors in pulmonary fibrosis: EMMPRIN/CD147 comes into play // Int J Mol Sci. 2022;23(13):6894. Doi: 10.3390/ijms23136894.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.